Effects of Plant Growth Regulators on Seed Germination Teatment of Nymphaea gigantea ‘Atrans’ Hybrid In Vitro Conditions

Main Article Content

Yaowamal Noimai

Abstract

Nymphaea gigantea ‘Atrans’ hybrid seeds were struggled with the germination by the physiological dormancy. The aim of this research was to explore the effects of plant growth regulators on seed germination in 3 periods during storage for 30, 60 and 90 days. First, the seed viability was done by TZ test according to the International Seed Testing Association (ISTA) regulation. In vitro culture of Nymphaea gigantea ‘Atrans’ hybrid using seeds explant in a sterile condition were studied. The seeds were sterilized with NaOCl, CuCl2 and H2O2, cultured on MS for 2 weeks. Then the sterilized seeds were stimulated cultured by KNO3, TDZ and semi-solid MS medium supplement with BAP and IAA. The experiment was managed in a completely randomized design (CRD) with 3 replications and was conducted at a laboratory for plant tissue culture of the Faculty of Science and Technology, RMUTT between December 2016 and March 2017. The results revealed that the highest seed viability test (70.0 %) from 30 days-stored seeds. The highest which were surface sterilized with 7.5 and 4.0 % H2O2 for 5 minutes per times gave 100% of sterilized seeds from 60 days-stored seeds. The seed germination treatment with appropriate concentration of TDZ were significant different (p≤0.05). The highest seed germination 88.89 % from 30 days-stored seeds by 2 mgl-1 TDZ within 8 weeks and 66.67 % by 0.2 mgl-1 KNO3 within 6 weeks.

Article Details

How to Cite
1.
Noimai Y. Effects of Plant Growth Regulators on Seed Germination Teatment of Nymphaea gigantea ‘Atrans’ Hybrid In Vitro Conditions. J Appl Res Sci Tech [Internet]. 2018 Dec. 26 [cited 2024 Mar. 29];17(2):54-6. Available from: https://ph01.tci-thaijo.org/index.php/rmutt-journal/article/view/146394
Section
Research Articles
Author Biography

Yaowamal Noimai, Rajamangala University of Technology Thanyaburi, THAILAND

กองอาคารสถานที่ ฝ่ายพิพิธภัณฑ์บัว มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคล จังหวัดปทุมธานี 12110

 

References

[1] รุ่งอรุณ ดอนจันทร์ทอง, บัวทิพย์ อุบลประเสริฐ, สรรลาภ สงวนดีกุล และ ณ.นพชัย ชาญศิลป์. (2556). “ผลของ 2iP, TDZ และ NAA ที่มีต่อการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่ออุบลชาติยืนต้นพันธุ์วันวิสาข์,” Proceeding of 6th Rajamangala University of Technology Tawan-ok Research Conference 2013, ชลบุรี, 58-63, 2556.
[2] Dalziell, E. L., Young, R. E., Dixon, K.W., & Merritt, D.J. (2016). Seed Dormancy and germination traits of Australian Nymphaea L. (Nymphaeaceae). School of Plant Biology, The University of Western Australia, 73-107.
[3] ปิยะวดี เจริญวัฒนะ, รุ่งโรจน์ วัฒนะจิตเสรี และ พีรวัส ภู่นภาประเสริฐ. (2559). ผลของ BA และ TDZ ต่อการพัฒนายอดอโกลนีมาพันธุ์ช้างแดงและพันธุ์อัญมณีในสภาพปลอดเชื้อ. วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์, 3 (พิเศษ 2), 63-69.
[4] Kaewsorn, P., Kasemsirisawad, S., Chulaka, P., & Somkul, C. (2013). Germination Enhancement of Elephant Apple (Dilenia indica L.) Seed by Water, GA3 and KNO3. Agricultural Sci.J, 44 (2) (Suppl.), 85-88.
[5] Sumlu, S., Atar, H. H., & Khawar, K.M. (2014). Breaking Seed Dormancy of Water Lily (Nymphaea Alba L.) Under In Vitro Conditions. Biotechnology and Biotechnological Equipment, 24 (1), 1582-1586.
[6] เยาวมาลย์ น้อยใหม่. (2555). การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อบัวลูกผสมพันธุ์ฉลองขวัญ. (วิทยานิพนธ์วิทยาศาสตรมหาบัณฑิต) มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลธัญบุรี คณะเทคโนโลยีการเกษตร สาขาเทคโนโลยีการผลิตพืช.
[7] Sagripanti, J. L., & Bonifacino, A. (1996). Comparative Sporicidal Effects of Liquid Chemical Agents. Applied and Environmental Microbiology. Feb, 545-551.
[8] Victoria, C., Timea, B.A., Liliana, J., & Mihai, M. (2010). In vitro culture initiation and phytohormonal influence on Dianthus henteri – a Romania endemic species. Romania Biotechnological Letters, 15 (1), 25-33.
[9] Nidhi, S., Barkha, K., Vikas, S., Kumar, N. Y., Dobiyal A. K., Sanjay, G., & Singh, J. V. (2010). Standardization of Sterilization Protocol for Micropropagation of Aconitum heterophyllum- An Endangered Medicine Herb. Acadamic Arena, 2 (6). 37-42.
[10] Scharpf, R. F. (1970). Seed viability, germination and radicle growth of dwarf mistletoe in California. Berkeley, Calif. Pacific SW. Forest & Range Exp. Sta., 18.
[11] Muenscher, W.C. (1936). Storage and germination of seed of aquatic plants. New York (Cornell University) Agr. Exp. Sta. Bul. 652, 1-17.
[12] อนุรัชนี ยนปลัดยศ และ สุรพงษ์ ดำรงกิตติกุล. (2555). อิทธิพลของอุณหภูมิและวัสดุที่ใช้บรรจุเมล็ดพันธุ์ในการเก็บรักษาต่อคุณภาพของเมล็ดพันธุ์ปอเทือง. การประชุมวิชาการแห่งชาติ มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ วิทยาเขตกำแพงแสน, 9, 1305-1312.
[13] Hye, N. B., Joo, J. H., Kwon, K. S., & Ki, H. Y. (1998). Quantitative viability of seaweed tissue assessed with 2,3,5-triphenyltetrazoluim chloride. Journal of Applied Phycology, 10, 31-36.
[14] Buddharaksa P., U-Kong W. & Sanguansermsri M. (2011). In vitro propagation of Hippeastrum johnsonii Bury. in a sterile condition. Naresuan Phayao Journal, 4 (3), Sep-Dec.
[15] โสภิตา คำหาญ. (2546). การเสื่อมสภาพของเมล็ดพันธุ์. (วิทยานิพนธ์วิทยาศาสตรมหาบัณฑิต) มหาวิทยาลัยอุบลราชธานี คณะเกษตรศาสตร์ สาขาเทคโนโลยีการเกษตร.
[16] จันทร์วิภา บุญอินทร์, ศาลักษณ์ พรรณศิริ และ มณฑล จาเริญพฤกษ์. (2558). ผลของ BAP, kinetin และ TDZ ต่อการเจริญเติบโตของใบสีทองในสภาพปลอดเชื้อ. การประชุมวิชาการมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์, มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์, 553-558.
[17] Ioana, P. T., & Doru, T. (2011). In Vitro Preservation of Three Species of Dianthus from Romania. Bulletin UASVM. 68 (1).
[18] Muneppa, S. T., & Raddy, A. C. (2014). Influence of Additives on Enhanced in Vitro Shoot Multiplication of Stevia rebaudiana (Bert.)—An Important Anti Diabetic Medicinal Plant. American Journal of Plant Science, 5, 192-199.
[19] Sekhar, P. C., Naidu, M. M. D., & Varadarajula, N. C. (2014). The Stimulatory Effects of the Antimicrobial Agents Bavistin, Cefotaxime and Kanamycin on In Vitro Plant Regeneration of Centella asiatica (L.)-An Important Antijaundice Medicinal Plant. American Journal of Plant Sciences, 5, 279-285.
[20] มาลี ณ นคร, วีระพงษ์ เสนะวีระกุล และ มินตา ชัยประสงค์สุข. (2552). การขยายพันธุ์หม้อข้าวหม้อแกงลิง “ไวกิ้ง” โดยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ. การประชุมวิชาการพฤกษศาสตร์แห่งประเทศไทย ครั้งที่ 3, มหาวิทยาลัยมหิดล กรุงเทพฯ, 57.
[21] กาญจนรี พงษ์ฉวี, รัฐภัทร์ ประดิษฐ์สรรพ์, วรรณดา พิพัฒน์เจริญชัย และ ยุทธภูมิ ศรีสงคราม. (2557). การขยายพันธุ์พรรณไม้น้ำ Cryptocoryne retrospiralis (Roxb.) Fischer ในสภาพปลอดเชื้อ. สถาบันวิจัยสัตว์น้ำสวยงามและพรรณไม้น้ำ, สำนักวิจัยและพัฒนาประมงน้ำจืด กรมประมง.
[22] ณราวุฒิ ปิยโชติสกุลชัย. (2539). ผลของสารควบคุมการเจริญเติบโตที่มีต่อการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อบัวหลวง. (วิทยานิพนธ์วิทยาศาสตรมหาบัณฑิต) มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ คณะวิทยาศาสตร์ ภาควิชาพฤกษศาสตร์.